普通PCR、qPCR、Digital PCR,三朵金花你爱哪朵!

2018-11-06

提起PCR,在生物及其相关行业内可谓如雷贯耳,无人不知无人不晓,其影响之深,应用之广可见一斑。

1985年,美国PE-Cetus公司的Mullis等人发明了聚合酶链反应(PCR),实现了在试管中模拟细胞内的DNA复制。然而,采用E-coli DNA聚合酶进行PCR,由于该酶不耐热,使这一过程耗时,费力,且易出错。1988Saiki 等从温泉中分离的一株水生嗜热杆菌(thermus aquaticus) 中提取到一种耐热DNA聚合酶。 耐热DNA聚合酶的应用使得PCR能高效率的进行,随后PE-Cetus公司推出了第一台PCR自动化热循环仪,从此拉开了PCR大展拳脚的序幕。

    根据PCR的发展进程,本文将对普通PCR、实时荧光定量PCR和数字PCR这三代PCR进行分析,期望对PCR感兴趣的读者能从中有所收获。


普通PCR

基本原理

PCR(聚合酶链式反应)是一种体外DNA 扩增技术,是在模板DNA、引物和4种脱氧核苷酸存在的条件下,依赖于DNA聚合酶的酶促合反应,将待扩增的DNA片段与其两侧互补的寡核苷酸链引物经“高温变性—低温退火 —引物延伸”三步反应的多次循环,使DNA片段在数量上呈指数增加,从而在短时间内获得我们所需的大量的特定基因片段。DNA的半保留复制是生物进化和传代的重要途径。

PCR反应体系举例

10×扩增缓冲液      

10µl 

4dNTP混合物   

100250μmol/L

引物                   

520μmol/L

模板DNA                 

0.12µg

Taq DNA聚合酶    

5~10U

Mg2+                  

13mmol/L  

加双或三蒸水至    

100µl


仪器与耗材

基于聚合酶制造的PCR仪实际就是一个温控设备,能在变性温度、复性温度和延伸温度之间很好地进行控制。这些仪器主要用变温铝块、变温水浴及变温气流的方式达到热循环的目的,各有其优缺点,在此不再赘述。

结果检测

PCR反应扩增出很高的拷贝数,下一步检测就成了关键。荧光素(溴化乙锭,EB)染色凝胶电泳是最常用的检测手段。电泳法检测特异性不太高,引物两聚体等非特异性的杂交体很容易引起误判,但因为其简捷易行,成为了主流检测方法。

 

应用

PCR是一种用于放大扩增特定的DNA片段的分子生物学技术,它可看作是生物体外的特殊DNA复制,最大特点是能将微量的DNA大幅增加。因此,无论是化石中的古生物、历史人物的残骸,还是几十年前凶杀案中凶手所遗留的毛发、皮肤或血液,只要能分离出一丁点的DNA,就能用PCR加以放大,进行比对。这也是“微量证据”的威力之所在。


实时荧光定量PCR(Quantitative Real-time PCR,qPCR)

 

基本原理

qPCR 技术是在反应体系中加入荧光报告基团和荧光淬灭基团,随着PCR 反应的进行,扩增产物不断积累,导致荧光信号不断积累, 从而利用荧光信号的变化实时监测整个PCR进程。

    根据PCR定量原理公式可推导出, 模板起始拷贝数的对数与阈值循环数呈线性关系,模板起始拷贝数越多,荧光信号达到阈值的循环数越少,即Ct 值越小。利用已知起始拷贝数的标准样品绘制标准曲线,根据荧光基团发出的荧光强度与PCR 扩增产物的数量呈对应关系, 只要对荧光信号进行实时监测并得到未知样品的Ct值,即可通过标准曲线计算未知样品的起始拷贝数。

Ct值指PCR扩增过程中,扩增产物的荧光信号达到设定阈值时所经过的扩增循环数。相同模板进行96次扩增,终点处产物量不恒定,但Ct值却极具重现性。

模板DNA量越多,荧光达到域值的循环数越少,即Ct值越小。Log起始模板浓度与Ct呈线性关系,通过已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线,根据样品Ct值,就可以计算出样品中所含的模板量。

 


目前常用荧光标记方法

方法

优点

缺点

应用范围

SYBR Green I

适用性广

灵敏

方便

便宜

引物要求高

易出现非特异条带

科研中对各种目的基因定量分析,基因表达量的研究,转基因重组动植物研究

Taqman

特异性高

重复性好

价格高

只适合特定目标

病原体检测,疾病耐药基因研究,药物疗效考核,遗传疾病诊断

分子信标

高特异性

荧光背景低

只适合特定目标

设计困难

价格高

特定基因分析,SNP分析

荧光定量PCR反应体系

试剂

含量

2xGoTaq Master Mix

5µl

无核酸酶水

3.5µl

上游引物

0.25µl

下游引物

0.25µl

基因组DNA

1µl(约20ng)梯度稀释

10µl


仪器与耗材

在普通PCR仪的基础上增加一个荧光信号采集系统和计算机分析处理系统,就成了荧光定量PCR仪。其PCR扩增原理和普通PCR仪扩增原理相同,只是PCR扩增时加入的引物是利用同位素、荧光素等进行标记,使用引物和荧光探针同时与模板特异性结合扩增。扩增的结果通过荧光信号采集系统实时采集信号连接输送到计算机分析处理系统得出量化的实时结果输出,把这PCR仪叫做实时荧光定量PCR(qPCR)。荧光定量PCR仪有单通道,双通道,和多通道。当只用一种荧光探针标记的时候,选用单通道,有多荧光标记的时候用多通道。单通道也可以检测多荧光的标记的目的基因表达产物,因为一次只能检测一种目的基因的扩增量,需多次扩增才能检测完不同的目的基因片段的量。该仪器主要用于医学临床检测,生物医药研发,食品行业,科研院校等机构。

     

实时荧光定量PCR与普通PCR对比

实时荧光定量PCR

普通PCR

检测

荧光检测

电泳跑胶

特异性

引物和荧光探针,特异性高

引物,特异性低

灵敏度

荧光检测灵敏度高

电泳检测相对较低

自动化程度

无需跑胶,自动化程度高

结束后再跑胶

结果

全程监控,准确的算法进行定量

定性

污染

封闭体系,环境污染少

污染可能性大

应用

定性分析研究:杂合或纯合子鉴定,SNP分析等。

绝对定量研究:病毒和病原菌定量分析,基因拷贝数定量分析,GMO定量检测等。

相对定量研究:mRNA表达分析,siRNA效果确认,差异显示结果验证等。


1992年,Sykes等从非淋巴细胞和正常体细胞背景中鉴定突变的白血病细胞,检测了复杂背景下低丰度的IgH重链突变基因。该研究中提出了三个重要的原则:有限稀释、终点信号的有或无及对数据泊松分布的统计处理,为以后dPCR的发展奠定了基础,逐步拉开了Digital PCR研究和应用的序幕......

三朵金花,先表两朵,数字PCR(Digital PCR,dPCR)下期绽放!


参考文献


  1. 王玉倩,薛秀花.实时荧光定量PCR技术研究进展及其应用[J].生物学通报,2016, 51(2).

  2. 冯彩宁,荧光定量PCR实验原理及数据分析,生工生物工程(上海)有限公司.

  3. 张志坤,实时荧光定量PCR的原理、操作及其应用,河南农业大学生命科学研究中心.

  4. PCR技术发展和应用,百度文库.


 

 

本网站由阿里云提供云计算及安全服务 Powered by CloudDream